Celem kształcenia jest przekazanie studentowi wiedzy dotyczącej nowoczesnych technik analityki biochemicznej oraz opanowanie przez studenta podstawowych technik stosowanych w analizie biomolekuł. Student ma możliwość współpracować z grupą, wspólnie wykonywać zadania analityczne oraz brać odpowiedzialność za powierzony sprzęt.
Wymagania wstępne
Znajomość podstaw chemii i biochemii.
Zakres tematyczny
Podstawowe pojęcia i zasady analityki biochemicznej. Właściwości fizykochemiczne głównych klas biomolekuł, wykorzystywanie ich w analizie jakościowej i ilościowej.
Wybór metody analitycznej, metody statystyczne w analityce
Elektroforeza. Wprowadzenie do elektroforezy: teoria, przegląd metod i zastosowań. Konwencjonalna elektroforeza związków białkowych i niebiałkowych. Elektroforeza kapilarna.
Spektroskopia fluorescencji: Fosforescencja. Zastosowanie metody FACS i CD w biochemii. Metody luminescencyjne. Technika WB. Wprowadzenie do spektroskopii oscylacyjnej. Spektroskopia Ramana. Wprowadzenie do spektrometrii rozproszenia Rayleigha.
Spektrometria molekularna. Wprowadzenie do spektroskopii elektronowej. Zastosowania spektrofotometri absorpcyjna w świetle widzialnym i ultrafiolecie w badaniu biomolekuł.
Nefelometria i turbidymetria. Zaawansowana spektrometria statycznego i dynamicznego rozproszenia światła. Analiza elektrochemiczna. Konduktometria. Kulometria. Potencjometria. Woltametria.
Podstawy spektrometrii masowej: jonizacja, analizatory mas, detektory. Techniki MALDI-TOF i ESI.
Chromatografia. Metody radiochemiczne.
Automatyzacja metod bioanalitycznych.
Laboratoria 30h:
Spektrofotometria UV-Vis: wyznaczanie widm absorpcyjnych UV/Vis, sprawdzanie prawa Lamberta-Bera na wybranym układzie kolorymetrycznym - Oznaczanie stężenia albuminy metodą Lowry’ego. Ocena precyzji pipetowania.
Izolowanie DNA/RNA z komórek linii hodowlanych (komórek ludzkiej ostrej białaczki limfoblastycznej T). Oznaczanie ilościowe i jakościowe DNA/RNA w próbkach. Widmo kwasów nukleinowych.
Analiza Western blot: przygotowanie białka - liza komórek; SDS-PAGE; transfer białek na membranę; blokowanie miejsc niespecyficznych; inkubacja z przeciwciałami pierwszorzędowymi i drugorzedowymi; detekcja białek metodą chemiluminescencyjną.
Wykład: z wykorzystaniem prezentacji multimedialnej, pogadanka problemowa, praktyczna praca laboratoryjna
Efekty uczenia się i metody weryfikacji osiągania efektów uczenia się
Opis efektu
Symbole efektów
Metody weryfikacji
Forma zajęć
Warunki zaliczenia
Warunki zaliczenia: Wykład - egzamin końcowy, do którego student jest dopuszczany na podstawie uprzedniego zaliczenia ćwiczeń, przeprowadzony w formie pisemnej. Laboratorium - warunkiem zaliczenia jest obecność i uzyskanie pozytywnej oceny z kolokwiów i sprawozdań z ćwiczeń laboratoryjnych. Ocena końcowa to średnia arytmetyczna ocen cząstkowych.
Literatura podstawowa
1. Analiza instrumentalna w biochemii. Wybrane problemy instrumentalnej biochemii analitycznej. A.Kozik, M. Rąpała-Kozik, I. Guevara-Lora.
2. Analytical biochemistry (3rd Ed.) D. Holme. H.Peck
3. Diagnostyka laboratoryjna z elementami biochemii klinicznej. A. Dembińska-Kieć, J. Naskalski. Wyd III
3. Ćwiczenia z biochemii. L. Kłyszejko Stefanowicz
Literatura uzupełniająca
1. Artykuły naukowe w języku polskim i angielskim
Uwagi
Zmodyfikowane przez dr Andrzej Jurkowski (ostatnia modyfikacja: 20-04-2022 14:26)
Ta strona używa ciasteczek (cookies), dzięki którym nasz serwis może działać lepiej. Korzystając z niniejszej strony, wyrażasz zgodę na ich używanie. Dowiedz się więcej.