SylabUZ
| Course name | Primary Genetic Engineering Techniques |
| Course ID | 13.9-WB-BTP-PTIG-W-S14_pNadGen38881 |
| Faculty | Faculty of Exact and Natural Sciences |
| Field of study | biotechnology |
| Education profile | academic |
| Level of studies | First-cycle studies leading to Bachelor's degree |
| Beginning semester | winter term 2019/2020 |
| Semester | 5 |
| ECTS credits to win | 6 |
| Course type | obligatory |
| Teaching language | polish |
| Author of syllabus |
|
| The class form | Hours per semester (full-time) | Hours per week (full-time) | Hours per semester (part-time) | Hours per week (part-time) | Form of assignment |
| Lecture | 15 | 1 | - | - | Exam |
| Laboratory | 45 | 3 | - | - | Credit with grade |
Wykład z Podstawowych technik inżynierii genetycznej ma za zadanie przedstawienie studentowi zagadnień z zakresu technik wykorzystywanych do manipulacji materiałem genetycznym, różnych technik klonowania DNA oraz technik rekombinacji DNA. Zajęcia laboratoryjne mają na celu zapoznanie studenta z zasadami bezpiecznej pracy w laboratorium biologii molekularnej oraz przekazanie praktycznej wiedzy na temat podstawowych technik inżynierii genetycznej. Student powinien nabyć umiejętność przeprowadzenia eksperymentu klonowania oraz wypracować umiejętność krytycznej analizy i właściwej interpretacji wyników.
Kurs prowadzony jest w oparciu o wiedzę z wcześniejszych wykładów z biochemii, genetyki ogólnej, molekularnej i mikrobiologii.
Wykład: Termin „inżynieria genetyczna”. W jakim celu wykorzystuje się techniki inżynierii genetycznej? Korzyści i zagrożenia wynikające z manipulowania genami. Inżynieria genetyczna w świetle zagadnień moralnych i etycznych. Najważniejsze odkrycia w biologii molekularnej. Metody izolacji i oczyszczania DNA. Enzymy restrykcyjne jako podstawowe narzędzie w inżynierii genetycznej. Inne enzymy wykorzystywane do klonowania. Wektory wykorzystywane do klonowania. Dobór odpowiedniego typu wektora w zależności od docelowych komórek gospodarza. Metody wprowadzania DNA do komórek prokariotycznych i eukariotycznych. Schemat klonowania DNA. Strategie klonowania. Tworzenie bibliotek genomowych i cDNA. Selekcja i skrining pozytywnych klonów. Zajęcia laboratoryjne: -przygotowanie wektora-izolacja i oczyszczanie DNA plazmidowego, -technika prowadzenia rozdziału elektroforetycznego kwasów nukleinowych, - przygotowanie komórek kompetentnych, - przygotowanie wstawki do klonowania, - ligacja, - transformacja komórek kompetentnych, - analiza restrykcyjna rekombinanowanych plazmidów, - ekspresjonowanie i oczyszczanie rekombinowanego białka oraz analiza jego nadekspresji w rozdziale SDS-PAGE.
Podająca (wykład w formie prezentacji multimedialnej). Praktyczna (ćwiczenia w sali laboratoryjnej wyposażonej w odpowiedni sprzęt i aparaturę badawczą).
| Outcome description | Outcome symbols | Methods of verification | The class form |
Wykład – warunkiem zaliczenia jest uzyskanie pozytywnej oceny z egzaminu pisemnego, trwającego 90 min, do którego student jest dopuszczony na podstawie zaliczonego laboratorium. Egzamin zawiera 30 pytań (otwartych i zamkniętych), do zaliczenia na ocenę dostateczną konieczne jest uzyskanie 60% punktów możliwych do zdobycia. Laboratorium - warunkiem zaliczenia jest obecność na zajęciach, aktywny udział w ćwiczeniach oraz uzyskanie pozytywnych ocen z kolokwiów pisemnych w formie pytań otwartych i zamkniętych (wymagane powyżej 60% punktów możliwych do zdobycia) i sprawozdania. Ocena końcowa to średnia arytmetyczna pozytywnych ocen cząstkowych.
Modified by dr Ewa Bok (last modification: 01-05-2019 22:28)
